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La enfermedad puede desarrollarse a cualquier edad y con manifestaciones clínicas heterogéneas, aunque aparece típicamente en la infancia temprana. Los pacientes con EC pueden ser asintomáticos, presentar únicamente síntomas extraintestinales o padecer formas silentes de celiaquía. En la actualidad la EC con síntomas gastrointestinales clásicos se diagnostica objetivando la atrofia vellositaria, la hiperplasia de las criptas y la infiltración linfocitaria.</p><p id="par0010" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La EC es un trastorno multifactorial en el que interactúan factores genéticos y ambientales. Entre los factores ambientales se encuentran la exposición temprana al gluten, la lactancia materna de corta duración, las infecciones intestinales y las alteraciones de la microbiota.</p><p id="par0015" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Recientemente la literatura científica ha descrito alteraciones en la composición de la microbiota en pacientes celíacos<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0010"><span class="elsevierStyleSup">2</span></a>. Hasta el momento las diferencias en la composición de la microbiota y en metabolitos asociados entre pacientes celíacos y controles sanos (CS) han sido descritos en base a muestras fecales<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0015"><span class="elsevierStyleSup">3,4</span></a>. También se ha descrito una mayor diversidad bacteriana y diferencias en varios grupos de bacterias en la microbiota duodenal de pacientes pediátricos con EC<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0025"><span class="elsevierStyleSup">5–7</span></a>. Sin embargo, otros estudios no consiguieron detectar diferencias significativas entre la microbiota de niños celíacos y la de CS<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0040"><span class="elsevierStyleSup">8–10</span></a>. Cheng et al.<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0050"><span class="elsevierStyleSup">10</span></a> describieron una composición similar de la microbiota en niños celíacos y CS, pero observaron diferencias significativas en un perfil subpoblacional de 8 grupos bacterianos a nivel de género que podría desempeñar un papel específico en el trastorno epitelial de la EC.</p><p id="par0020" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Se han descrito cambios en la microbiota duodenal de pacientes celíacos adultos y pediátricos tanto con enfermedad activa<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0025"><span class="elsevierStyleSup">5,9,11</span></a> como cuando siguen una dieta sin gluten<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0060"><span class="elsevierStyleSup">12</span></a>. Wacklin et al.<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0065"><span class="elsevierStyleSup">13</span></a> encontraron diferencias entre la composición y la diversidad de la microbiota intestinal de adultos con síntomas intestinales clásicos de EC y las de adultos con síntomas extraintestinales, indicando que la composición de la microbiota residente en la mucosa duodenal de los pacientes difería basándose en las manifestaciones de la EC.</p><p id="par0025" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El objeto de nuestro estudio era establecer si la microbiota duodenal de los niños con EC activa y la de los controles difieren en su composición y biodiversidad para explicar las diferencias entre la microbiota de los pacientes pediátricos celíacos y la de los controles sanos.</p></span><span id="sec0010" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0070">Materiales y métodos</span><span id="sec0015" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0075">Sujetos</span><p id="par0030" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Se recogieron biopsias duodenales al diagnóstico de niños con EC que seguían una dieta normal con gluten, y de niños sanos. El grupo de niños sanos lo constituían pacientes que estaban siendo evaluados por trastornos funcionales gastrointetsinales no relacionados con la enfermedad celíaca ni el gluten. Todos los sujetos sanos tenían marcadores serológicos de EC negativos y una mucosa normal en la biopsias del intestino delgado (Marsh<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0)<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0070"><span class="elsevierStyleSup">14</span></a>. Los pacientes con EC tenían tanto marcadores serológicos positivos (anticuerpos antitransglutaminasa tisular IgA, anticuerpos antigliadina deaminada IgG y anticuerpos antiendomisio IgA) como lesiones histológicas en la biopsia duodenal.</p><p id="par0035" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El estudio se llevó a cabo conforme a los principios de la Declaración de Helsinki y siguiendo los <span class="elsevierStyleItalic">EEC Good Clinical Practice Guidelines</span> (Guía de Buena Práctica Clínica, documento 111/3976/88, julio de 1990), y dentro de marco legal vigente en España para regular la investigación clínica en seres humanos (Real Decreto 561/1993). El protocolo del estudio fue aprobado por el Comité de Ética del CSIC y por el hospital.</p><p id="par0040" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Se obtuvo el consentimiento informado de los padres de los niños incluidos en el estudio. Ningún caso incluido en el estudio había recibido tratamiento antibiótico en los 2 meses previos a la endoscopia. Se tomaron 4 biopsias de la mucosa duodenal de cada paciente. Dos muestras de cada paciente se enviaron para examen histológico empleando la clasificación de Marsh, y otras 2 se congelaron de inmediato tras su obtención y se almacenaron a –20<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>°C hasta su procesamiento para estudio bacteriológico. Estas últimas se suspendieron en 1<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>ml de PBS y se centrifugaron a 1.000<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span><span class="elsevierStyleItalic">g</span> durante 5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>min.</p></span><span id="sec0020" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0080">Extracción de ADN</span><p id="par0045" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El ADN total se extrajo de cada muestra mediante el procedimiento descrito por Martínez et al.<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0075"><span class="elsevierStyleSup">15</span></a> con las modificaciones publicadas por Tapia-Paniagua et al.<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0080"><span class="elsevierStyleSup">16</span></a>. Se trataron 20<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>μl de ADN con 2<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>μl de acetato de sodio 3M y 46<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>μl de isopropanol. Las muestras se centrifugaron a 12.000<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span><span class="elsevierStyleItalic">g</span> durante 6<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>min. Los precipitados de ADN se lavaron con etanol al 70% y centrifugados a 12.000 g durante 6 minutos, posteriormente se dejaron secar y fueron resuspendidos en agua químicamente pura.</p></span><span id="sec0025" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0085">PCR-electroforesis en gel con gradiente desnaturalizante</span><p id="par0050" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Para comparar los patrones de electroforesis en gel con gradiente gradiente desnaturalizante (DGGE) de la microbiota duodenal se amplificó el ADN mediante los cebadores específicos para el ADNr<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>16S del dominio Bacteria (968-GC-F y 1401-R). Estos cebadores se utilizaron para amplificar las regiones V6-V8 del ADNr<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>16S. Las mezclas y las condiciones utilizadas para llevar a cabo la PCR se han descrito previamente<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0060"><span class="elsevierStyleSup">12</span></a>. También se emplearon amplicones específicos para el género <span class="elsevierStyleItalic">Lactobacillus</span> (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#tbl0005">tabla 1</a>). Las mezclas (50<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>μl) contenían 1,25<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>U de polimerasa Taq (Life Technologies Gaithersburg, MD, EE.<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>UU.), 20<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mM de Tris-HCl (pH<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>8,5), 50<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mM de KCl, 3<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mM de MgCl<span class="elsevierStyleInf">2</span>, 200<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>μM de cada deoxinucleósido trifosfato, 5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>pmol de los cebadores, 1<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>μl de ADN molde y agua esterilizada mediante radiación ultravioleta. La PCR se llevó a cabo en un termociclador T1 (Whatman Biometra, Göttingen, Alemania) aplicando un ciclo de 2<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>min a 94<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>°C, 35 ciclos de 30<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>s a 95<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>°C, 40<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>s a 56<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>°C, y 1<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>min a 72<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>°C, y finalmente un ciclo de 5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>min a 72<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>°C. Las alícuotas (5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>μl) se analizaron mediante electroforesis en gel de agarosa al 1,5% (p/v) que contenía bromuro de etidio.</p><elsevierMultimedia ident="tbl0005"></elsevierMultimedia><p id="par0055" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los amplicones obtenidos se separaron por DGGE siguiendo las instrucciones de Muyzer et al.<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0085"><span class="elsevierStyleSup">17</span></a> mediante un sistema Dcode TM (Bio-Rad Laboratories, Hercules, California). La electroforesis se llevó a cabo en gel de poliacrilamida al 8% (37,5:1 acrilamida-bisacrilamida; dimensiones, 200<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>×<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>200<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>×<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>1<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mm) empleando un gradiente desnaturalizante del 30 al 55% para separar los productos de la PCR. La solución desnaturalizante al 100% contenía 7<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>M de urea y un 40% (v/v) de formamida desionizada. Se añadieron a los geles las muestras de la PCR en alícuotas de 13<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>μl por carril. Se realizó la electroforesis de los geles durante 16<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>h a 85<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>V en tampón TAE 0,5X (20<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mM tris-acetato [pH<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>7,4], 10<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mM acetato de sodio, 0,5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mM Na<span class="elsevierStyleInf">2</span>EDTA) a una temperatura constante de 60<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>°C, y a continuación se tiñó con nitrato de plata<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0090"><span class="elsevierStyleSup">18</span></a>.</p></span><span id="sec0030" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0090">Análisis de patrones de DGGE</span><p id="par0060" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los patrones de bandas obtenidos se analizaron mediante el programa FPQuest versión 4.0 (Applied Maths BVBA, Sint-Martens-Latem, Bélgica). Se generó una matriz de similitud para las curvas densitométricas de los patrones de bandas utilizando el coeficiente de Pearson. Posteriormente se agruparon los patrones por similitud mediante la construcción de dendrogramas aplicando el método UPGMA (del inglés, Unweighted Pair Group Method with Arithmetic Mean). Para determinar la diversidad estructural de la comunidad microbiana correspondiente a los patrones de bandas de la DGGE se calcularon varios parámetros: a)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>la riqueza específica (R) se estimó en base al número total de bandas; b)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>el índice de Shannon (H′) se calculó mediante la función H′<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>–Σ<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>Pi log<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>Pi, en la que Pi se define como (ni/N), ni es el área del pico de cada banda y N es la suma de las áreas de intensidad de todas las bandas; c)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>la riqueza ponderada por el rango (Rr) se calculó como el número total de bandas multiplicado por el porcentaje de gradiente desnaturalizante requerido para describir la diversidad total de la muestra analizada, de acuerdo con la siguiente fórmula: Rr<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>(N<span class="elsevierStyleSup">2</span><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>×<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>D<span class="elsevierStyleInf">g</span>), donde N representa el número total de bandas en el patrón, y D<span class="elsevierStyleInf">g</span> el gradiente de desnaturalización comprendido entre las bandas primera y última del patrón<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0095"><span class="elsevierStyleSup">19</span></a>.</p></span><span id="sec0035" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0095">Secuenciación de las bandas de DGGE</span><p id="par0065" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Para determinar cuáles eran las bacterias principales, se recuperaron para su secuenciación las bandas predominantes de los geles de DGGE mediante puntas de pipeta estériles, introduciéndose en 100<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>μl de agua bidestilada (ddH<span class="elsevierStyleInf">2</span>O) e incubándose a 4<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>°C hasta el día siguiente. Se emplearon alícuotas de 5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>μl como molde para amplificar el ADN mediante PCR, siguiendo el procedimiento explicado anteriormente. Los productos se volvieron a someter a DGGE para confirmar sus posiciones y también fueron secuenciados por ciclos con los cebadores 968 sin la pinza GC (5′-AACGCGAAGAACCTTAC-3′), 1401-R y (5′ACG’GCTACCTTGTTACGACTT-3′). La PCR se llevó a cabo en un termociclador T1 (Whatman Biometra, Göttingen, Alemania) aplicando un ciclo a 94<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>°C durante 2<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>min, 28 ciclos a 95<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>°C durante 30<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>s, 56<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>°C durante 40<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>s y 72<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>°C durante 1<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>min, y por último un ciclo a 72<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>°C de 5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>min. Los productos se purificaron con el kit de purificación Spin Kit PCR (Roche). Los amplicones se secuenciaron en un secuenciador ABI PRISM 377 (Perkin-Elmer). La secuenciación se hizo en ambas direcciones con los cebadores RV-M y M13-47, respectivamente. Las secuencias resultantes (∼<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>500<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>pb) se compararon con las secuencias de las bases de datos de la <span class="elsevierStyleItalic">National Center for Biotechnology Information</span> (NCBI) o la <span class="elsevierStyleItalic">Greengenes DNA sequence database</span> empleando el algoritmo BLAST<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0105"><span class="elsevierStyleSup">21</span></a>. Las secuencias mostraron una similitud con las presentes en la base de datos superior al 97%<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0110"><span class="elsevierStyleSup">22</span></a>.</p></span><span id="sec0040" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0100">Análisis de componentes principales</span><p id="par0070" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El análisis de componentes principales (ACP) es un método matemático que emplea una transformación ortogonal para convertir un conjunto de observaciones de variables posiblemente correlacionadas en un conjunto de valores de variables linealmente incorrelacionadas entre sí. Este método ha sido empleado para simplificar patrones de RFLP<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0115"><span class="elsevierStyleSup">23</span></a>. En nuestro estudio se aplicó a la correlación de diferentes parámetros ecológicos (H’, R y Rr) e histológicos y la proporción de ADN de cada especie bacteriana detectada en las muestras de la microbiota intestinal de los pacientes. El ACP se realizó con la ayuda del software XLSTAT versión 4.5 para MS Excel (Addinsoft, España). La influencia de las variables en el ACP se determinó mediante la distancia de cada variable al centro del eje d<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>≥<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>√2/n, donde n es el número de variables. El ADN se cuantificó por medio de la intensidad de las bandas de DGGE.</p></span><span id="sec0045" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0105">Análisis estadístico</span><p id="par0075" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Las variables se expresaron como media y desviación estándar y el análisis estadístico se llevó a cabo con el software <span class="elsevierStyleItalic">Statistical Package for Social Science for Windows</span> (SPSS) versión 15.0, SPSS Inc., Chicago, IL, EE.<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>UU.). Los índices ecológicos se analizaron mediante la prueba de Kruskal-Wallis con el software Statgraphics Plus 5.0 (Statgraphics Corporation, Rockville, MD, EE.<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>UU.). La significación estadística se estableció en p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>≤<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,05.</p></span></span><span id="sec0050" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0110">Resultados</span><p id="par0080" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Se recogieron especímenes mediante biopsia duodenal de 11 niños que seguían una dieta con gluten al diagnóstico de EC y de 6 niños sanos (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#tbl0010">tabla 2</a>)</p><elsevierMultimedia ident="tbl0010"></elsevierMultimedia><span id="sec0055" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0115">Composición y diversidad de la microbiota por DGGE</span><p id="par0085" class="elsevierStylePara elsevierViewall">No se encontraron diferencias significativas entre sujetos sanos y pacientes celíacos en la riqueza, la diversidad y en la riqueza ponderada por el rango (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#tbl0015">tabla 3</a>), aunque estos 3 valores fueron significativamente menores en niños celíacos en comparación con CS cuando se analizó el género <span class="elsevierStyleItalic">Lactobacillus</span> (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#tbl0015">tabla 3</a>).</p><elsevierMultimedia ident="tbl0015"></elsevierMultimedia><p id="par0090" class="elsevierStylePara elsevierViewall">También se aplicó un algoritmo de agrupamiento a los patrones de DGGE de la microbiota duodenal. Esto reveló altos porcentajes de similitud intragrupo (98%) en pacientes con histología Marsh<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>3c. El resto de los pacientes mostró una similitud del 80 al 30%, y el grupo no se formó en base a otras características (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0005">fig. 1</a>).</p><elsevierMultimedia ident="fig0005"></elsevierMultimedia><p id="par0095" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Se hizo un segundo dendrograma empleando exclusivamente los amplicones del género <span class="elsevierStyleItalic">Lactobacillus</span>, que mostró 2 grupos distintos con una similitud del 40% aproximadamente, pero los grupos no se formaron en base a ninguna de las características analizadas (datos no mostrados).</p><p id="par0100" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Las bandas de mayor intensidad en los geles de DGGE de las biopsias se secuenciaron y compararon con las referencias de BLAST en base a la relación filogenética con la secuencia parcial de ADNr<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>16S de ∼<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>500<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>pb (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#tbl0020">tabla 4</a>). En pacientes celíacos, las bandas se asociaban mayoritariamente a géneros como <span class="elsevierStyleItalic">Streptococcus</span>, <span class="elsevierStyleItalic">Bacterioides</span> y la especie <span class="elsevierStyleItalic">E. coli</span>, mientras que en sujetos sanos las bandas predominantes correspondían a <span class="elsevierStyleItalic">Bifidobacterium, Acinetobacter</span> y <span class="elsevierStyleItalic">Lactobacillus.</span> Otros grupos, como <span class="elsevierStyleItalic">Streptococcus</span> (17 al 13%) o <span class="elsevierStyleItalic">Bacteroides</span> (16 al 11%) fueron menos frecuentes.</p><elsevierMultimedia ident="tbl0020"></elsevierMultimedia><p id="par0105" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El ACP mostró que 2 factores (F1 y F2) podían explicar el 83,44% de la varianza encontrada en la microbiota y las demás variables analizadas en pacientes y controles. Cabe destacar que las variables relacionadas con la riqueza, la diversidad y la habitabilidad en el género <span class="elsevierStyleItalic">Lactobacillus</span> cambian de manera inversa a las demás variables empleadas en el F1. Además, el F1 separaba al grupo de CS de los pacientes celíacos, de manera que el F1 puede ser un factor relacionado con la presencia o ausencia de enfermedad (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0010">fig. 2</a>).</p><elsevierMultimedia ident="fig0010"></elsevierMultimedia></span></span><span id="sec0060" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0120">Discusión</span><p id="par0110" class="elsevierStylePara elsevierViewall">No se encontraron diferencias significativas en la diversidad estructural de la comunidad microbiana correspondiente a los patrones de bandas de DGGE entre pacientes celíacos y controles sanos. El estudio de DGGE con cebadores universales no mostró una mayor diversidad bacteriana en la microbiota del intestino delgado de pacientes con EC, pero los índices ecológicos (H’, R y Rr) fueron significativamente más bajos en celíacos que en CS cuando se analizó el género <span class="elsevierStyleItalic">Lactobacillus</span> por separado.</p><p id="par0115" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Nadal et al.<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0025"><span class="elsevierStyleSup">5</span></a> llevaron a cabo análisis bacteriológicos de especímenes de biopsias duodenales realizadas a pacientes pediátricos con EC. Sus resultados mostraron que los pacientes con enfermedad activa tenían un número total de bacterias significativamente mayor, sobre todo de bacterias gramnegativas, en comparación con pacientes asintomáticos y sujetos sanos; y que la razón de <span class="elsevierStyleItalic">Lactobacillus-Bifidobacterium</span> entre <span class="elsevierStyleItalic">Bacteroides-Escherichia coli</span> era más baja en pacientes celíacos. Nistal et al.<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0045"><span class="elsevierStyleSup">9</span></a> analizaron la secuenciación del gen ARNr<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>16S bacteriano del ADN extraído de biopsias duodenales y mostraron que la diversidad de la microbiota duodenal difería de manera significativa entre adultos celíacos tratados y no tratados.</p><p id="par0120" class="elsevierStylePara elsevierViewall">En nuestro estudio, los pacientes con lesiones Marsh<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>3c se agrupaban por separado en el ACP de los patrones de DGGE. El resto de los pacientes que tenían histologías Marsh<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>3a y Marsh<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>3b y un caso con Marsh<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>2 compartían una microbiota diferente en comparación con los pacientes con Marsh<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>3c, que estaban agrupados más estrechamente. Esto sugiere que la composición de la microbiota duodenal variaba en función del grado de daño intestinal.</p><p id="par0125" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Es probable que las condiciones del medio ambiente intestinal en casos de atrofia vellositaria grave causen cambios profundos en la comunidad microbiana. Puede que algunos de los cambios en la composición de la microbiota duodenal se deban a las consecuencias del patrón inflamatorio destructivo, lo que es más evidente en la atrofia vellositaria duodenal más avanzada. En estos casos el efecto inflamatorio del gluten puede incrementar aún más la activación de la inflamación intestinal que resulta del patrón destructivo de lesión atrófica asociado al tipo Marsh<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>3c. Podría pensarse que la atrofia extrema de la mucosa duodenal en la EC no tratada, del tipo Marsh<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>3c, promueve una colonización similar de la mucosa en estos pacientes.</p><p id="par0130" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Harán falta más estudios para entender la interacción microbiota-huésped y desentrañar la relevancia de microbiotas específicas para determinar si son únicamente consecuencia de la EC o si están involucradas en la variabilidad y en distintos grados de enteropatía en esta enfermedad. A este respecto, recientemente se han asociado alteraciones en la microbiota, como la reducción de la riqueza microbiana, con la persistencia de síntomas en pacientes celíacos tratados<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0120"><span class="elsevierStyleSup">24</span></a>.</p><p id="par0135" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Esperamos que en el futuro la investigación encuentre marcadores bacteriológicos en la microbiota duodenal de pacientes celíacos por razones de diagnóstico y tratamiento.</p></span><span id="sec0065" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0125">Conflicto de intereses</span><p id="par0140" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los autores declaran no tener ningún conflicto de intereses.</p></span></span>" "textoCompletoSecciones" => array:1 [ "secciones" => array:10 [ 0 => array:3 [ "identificador" => "xres623596" "titulo" => "Resumen" "secciones" => array:4 [ 0 => array:2 [ "identificador" => "abst0005" "titulo" => "Objetivos" ] 1 => array:2 [ "identificador" => "abst0010" "titulo" => "Material y métodos" ] 2 => array:2 [ "identificador" => "abst0015" "titulo" => "Resultados" ] 3 => array:2 [ "identificador" => "abst0020" "titulo" => "Conclusiones" ] ] ] 1 => array:2 [ "identificador" => "xpalclavsec637224" "titulo" => "Palabras clave" ] 2 => array:3 [ "identificador" => "xres623595" "titulo" => "Abstract" "secciones" => array:4 [ 0 => array:2 [ "identificador" => "abst0025" "titulo" => "Objectives" ] 1 => array:2 [ "identificador" => "abst0030" "titulo" => "Material and methods" ] 2 => array:2 [ "identificador" => "abst0035" "titulo" => "Results" ] 3 => array:2 [ "identificador" => "abst0040" "titulo" => "Conclusions" ] ] ] 3 => array:2 [ "identificador" => "xpalclavsec637225" "titulo" => "Keywords" ] 4 => array:2 [ "identificador" => "sec0005" "titulo" => "Introducción" ] 5 => array:3 [ "identificador" => "sec0010" "titulo" => "Materiales y métodos" "secciones" => array:7 [ 0 => array:2 [ "identificador" => "sec0015" "titulo" => "Sujetos" ] 1 => array:2 [ "identificador" => "sec0020" "titulo" => "Extracción de ADN" ] 2 => array:2 [ "identificador" => "sec0025" "titulo" => "PCR-electroforesis en gel con gradiente desnaturalizante" ] 3 => array:2 [ "identificador" => "sec0030" "titulo" => "Análisis de patrones de DGGE" ] 4 => array:2 [ "identificador" => "sec0035" "titulo" => "Secuenciación de las bandas de DGGE" ] 5 => array:2 [ "identificador" => "sec0040" "titulo" => "Análisis de componentes principales" ] 6 => array:2 [ "identificador" => "sec0045" "titulo" => "Análisis estadístico" ] ] ] 6 => array:3 [ "identificador" => "sec0050" "titulo" => "Resultados" "secciones" => array:1 [ 0 => array:2 [ "identificador" => "sec0055" "titulo" => "Composición y diversidad de la microbiota por DGGE" ] ] ] 7 => array:2 [ "identificador" => "sec0060" "titulo" => "Discusión" ] 8 => array:2 [ "identificador" => "sec0065" "titulo" => "Conflicto de intereses" ] 9 => array:1 [ "titulo" => "Bibliografía" ] ] ] "pdfFichero" => "main.pdf" "tienePdf" => true "fechaRecibido" => "2015-05-04" "fechaAceptado" => "2015-06-04" "PalabrasClave" => array:2 [ "es" => array:1 [ 0 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Palabras clave" "identificador" => "xpalclavsec637224" "palabras" => array:4 [ 0 => "Enfermedad celíaca" 1 => "Microbiota" 2 => "MARSH" 3 => "<span class="elsevierStyleItalic">Lactobacillus</span>" ] ] ] "en" => array:1 [ 0 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Keywords" "identificador" => "xpalclavsec637225" "palabras" => array:4 [ 0 => "Coeliac disease" 1 => "Microbiota" 2 => "MARSH" 3 => "<span class="elsevierStyleItalic">Lactobacillus</span>" ] ] ] ] "tieneResumen" => true "resumen" => array:2 [ "es" => array:3 [ "titulo" => "Resumen" "resumen" => "<span id="abst0005" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0010">Objetivos</span><p id="spar0005" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Comprobar diferencias en la microbiota duodenal al diagnóstico de la enfermedad celíaca (EC) en relación con un grupo control.</p></span> <span id="abst0010" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0015">Material y métodos</span><p id="spar0010" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Se obtuvieron muestras de biopsias duodenales en 11 pacientes con EC al diagnóstico y en 6 controles. Se analizó la microbiota duodenal total así como la perteneciente al género <span class="elsevierStyleItalic">Lactobacillus</span> mediante la técnica molecular PCR-electroforesis en gel con gradiente desnaturalizante (DGGE). Los patrones de bandas obtenidos en los geles resultantes fueron analizados para determinar las diferencias presentes entre la microbiota de pacientes con EC y de los controles (FPQuest 4.5), mientras que los índices ecológicos (riqueza, diversidad y habitabilidad) fueron calculados con el programa Past versión 2.17.</p></span> <span id="abst0015" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0020">Resultados</span><p id="spar0015" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">La microbiota intestinal de los individuos con histología Marsh 3c presentó similitud del 98% y fue diferente del resto de pacientes celiacos. Las principales diferencias se obtuvieron en los índices ecológicos pertenecientes al género <span class="elsevierStyleItalic">Lactobacillus</span>, con importante reducción de especies en los celiacos respecto al grupo control (riqueza, diversidad y habitabilidad). En los pacientes con EC las bandas principalmente fueron catalogadas con las especies <span class="elsevierStyleItalic">Streptococcus, Bacteroides</span> y <span class="elsevierStyleItalic">E.</span><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span><span class="elsevierStyleItalic">coli.</span> En los controles las bandas predominantes fueron <span class="elsevierStyleItalic">Bifidobacterium, Acinetobacter</span> y <span class="elsevierStyleItalic">Lactobacillus</span>; sin embargo, los <span class="elsevierStyleItalic">Streptococcus</span> y <span class="elsevierStyleItalic">Bacteroides</span> fueron más bajos.</p></span> <span id="abst0020" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0025">Conclusiones</span><p id="spar0020" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Los índices ecológicos aplicados al género <span class="elsevierStyleItalic">Lactobacillus</span> fueron significativamente reducidos en los pacientes celíacos. Los casos con mayor afectación histológica presentaron una microbiota duodenal similar.</p></span>" "secciones" => array:4 [ 0 => array:2 [ "identificador" => "abst0005" "titulo" => "Objetivos" ] 1 => array:2 [ "identificador" => "abst0010" "titulo" => "Material y métodos" ] 2 => array:2 [ "identificador" => "abst0015" "titulo" => "Resultados" ] 3 => array:2 [ "identificador" => "abst0020" "titulo" => "Conclusiones" ] ] ] "en" => array:3 [ "titulo" => "Abstract" "resumen" => "<span id="abst0025" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0035">Objectives</span><p id="spar0025" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">To establish whether the duodenal mucosa microbiota of children with active coeliac disease (CD) and healthy controls (HC) differ in composition and biodiversity.</p></span> <span id="abst0030" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0040">Material and methods</span><p id="spar0030" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Samples of duodenal biopsies in 11 CD patients were obtained at diagnosis, and in 6 HC who were investigated for functional intestinal disorders of non-CD origin. Total duodenal microbiota and the belonging to the genus <span class="elsevierStyleItalic">Lactobacillus</span> using PCR-denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE) were analysed. The banding patterns obtained in the resulting gels were analysed to determine the differences between the microbiota of CD patients and HC (FPQuest 4.5) while environmental indexes (richness, diversity and habitability) were calculated with the Past version 2.17 program.</p></span> <span id="abst0035" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0045">Results</span><p id="spar0035" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">The intestinal microbiota of patients with Marsh 3c lesion showed similarity of 98% and differs from other CD patients with other type of histologic lesion as Marsh<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>3a, Marsh<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>3b and Marsh<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>2. The main differences were obtained in ecological indexes belonging to the genus <span class="elsevierStyleItalic">Lactobacillus</span>, with significant richness, diversity and habitability reduction in CD patients. In CD bands were categorized primarily with <span class="elsevierStyleItalic">Streptococcus</span>, <span class="elsevierStyleItalic">Bacteroides</span> and <span class="elsevierStyleItalic">E.</span><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span><span class="elsevierStyleItalic">coli</span> species. In HC the predominant bands were <span class="elsevierStyleItalic">Bifidobacterium, Lactobacillus</span> and <span class="elsevierStyleItalic">Acinetobacter</span>, though the <span class="elsevierStyleItalic">Streptococcus</span> and <span class="elsevierStyleItalic">Bacteroides</span> were lower.</p></span> <span id="abst0040" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0050">Conclusions</span><p id="spar0040" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">The celiac patients with major histological affectation presented a similar microbiota duodenal. The ecological indexes applied to the genus <span class="elsevierStyleItalic">Lactobacillus</span> were significantly reduced in CD.</p></span>" "secciones" => array:4 [ 0 => array:2 [ "identificador" => "abst0025" "titulo" => "Objectives" ] 1 => array:2 [ "identificador" => "abst0030" "titulo" => "Material and methods" ] 2 => array:2 [ "identificador" => "abst0035" "titulo" => "Results" ] 3 => array:2 [ "identificador" => "abst0040" "titulo" => "Conclusions" ] ] ] ] "multimedia" => array:6 [ 0 => array:7 [ "identificador" => "fig0005" "etiqueta" => "Figura 1" "tipo" => "MULTIMEDIAFIGURA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "figura" => array:1 [ 0 => array:4 [ "imagen" => "gr1.jpeg" "Alto" => 1572 "Ancho" => 1500 "Tamanyo" => 123791 ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "<p id="spar0045" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Análisis de agrupamiento de patrones de bandas de DGGE de los grupos bacterianos en la microbiota duodenal de pacientes celíacos (EC) y controles sanos (CS).</p>" ] ] 1 => array:7 [ "identificador" => "fig0010" "etiqueta" => "Figura 2" "tipo" => "MULTIMEDIAFIGURA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "figura" => array:1 [ 0 => array:4 [ "imagen" => "gr2.jpeg" "Alto" => 1418 "Ancho" => 3167 "Tamanyo" => 229785 ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "<p id="spar0050" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">ACP aplicado a la composición de la microbiota de las biopsias y los parámetros analizados en pacientes celíacos y controles sanos (CS). Correlación de las variables analizadas y los componentes principales que explican el 83,44% de la varianza. Distribución de sujetos celíacos y controles sanos a lo largo de los ejes F1 y F2.</p>" ] ] 2 => array:7 [ "identificador" => "tbl0005" "etiqueta" => "Tabla 1" "tipo" => "MULTIMEDIATABLA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "tabla" => array:1 [ "tablatextoimagen" => array:1 [ 0 => array:2 [ "tabla" => array:1 [ 0 => """ <table border="0" frame="\n \t\t\t\t\tvoid\n \t\t\t\t" class=""><tbody title="tbody"><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top" style="border-bottom: 2px solid black">Cebadores \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top" style="border-bottom: 2px solid black">Secuencia (5¿-3¿) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top" style="border-bottom: 2px solid black">Tamaño del producto (pb) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top" style="border-bottom: 2px solid black">Ref. \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">Cebadores universales (Bacteria)<br>968-GC-F<br>1401-R \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">CGGTGTGTACAAGACCC<br>GCclamp-5’GGGAACGCGAAGAACCTTAC-3 5’CGGTGTGTACAAGACCC-3’ \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">470 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top"><a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0100"><span class="elsevierStyleSup">20</span></a> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">Cebadores para el género <span class="elsevierStyleItalic">Lactobacillus</span>: Lac1, Lac2 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">AGCAGTAGGGAATCTTCCA<br>GCclamp-ATTYCACCGCT ACACATG \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">380 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top"><a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0020"><span class="elsevierStyleSup">4</span></a> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr></tbody></table> """ ] "imagenFichero" => array:1 [ 0 => "xTab1023033.png" ] ] ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "<p id="spar0055" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Cebadores empleados para el análisis de la microbiota intestinal mediante DGGE</p>" ] ] 3 => array:7 [ "identificador" => "tbl0010" "etiqueta" => "Tabla 2" "tipo" => "MULTIMEDIATABLA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "tabla" => array:2 [ "leyenda" => "<p id="spar0065" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Clasificación de Marsh modificada: Marsh<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0, mucosa normal; Marsh<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>1, lesión infiltrativa: linfocitosis intraepitelial aumentada en el epitelio de las vellosidades en una mucosa por lo demás normal con una relación vellosidad-cripta normal; Marsh<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>2, tipo hiperplásico: hiperplasia de las criptas con vellosidades normales y linfocitosis intraepitelial aumentada; Marsh<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>3, lesión atrófica con hiperplasia de las criptas y elevación de linfocitos intraepiteliales (Marsh<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>3a: atrofia vellositaria parcial; Marsh<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>3b: atrofia vellositaria subtotal; Marsh<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>3c: atrofia vellositaria total) <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0070"><span class="elsevierStyleSup">14</span></a>.</p>" "tablatextoimagen" => array:1 [ 0 => array:2 [ "tabla" => array:1 [ 0 => """ <table border="0" frame="\n \t\t\t\t\tvoid\n \t\t\t\t" class=""><thead title="thead"><tr title="table-row"><th class="td" title="table-head " align="left" valign="top" scope="col" style="border-bottom: 2px solid black">Característica \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th><th class="td" title="table-head " align="left" valign="top" scope="col" style="border-bottom: 2px solid black">EC \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th><th class="td" title="table-head " align="left" valign="top" scope="col" style="border-bottom: 2px solid black">CS \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th><th class="td" title="table-head " align="left" valign="top" scope="col" style="border-bottom: 2px solid black">p \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th></tr></thead><tbody title="tbody"><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">Número \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">11 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">6 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="" valign="top"> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">Media (DE) edad (años) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">5,0 (3,4) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">8,8 (3,1) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="" valign="top"> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">Sexo (masculino/femenino) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">4/7 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">3/3 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="" valign="top"> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">Anticuerpos antitransglutaminasa tisular IgA positivos \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">11 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="" valign="top"> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">Anticuerpos antigliadina deaminada IgG positivos \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">11 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="" valign="top"> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">Anticuerpos antiendomisio IgA positivos \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">11 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="" valign="top"> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">Biopsia duodenal: clasificación de Marsh (número de casos) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">Marsh 2 (1)<br>Marsh 3a (2)<br>Marsh 3b (2)<br>Marsh 3c (6) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">Marsh 0 (6) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="" valign="top"> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr></tbody></table> """ ] "imagenFichero" => array:1 [ 0 => "xTab1023034.png" ] ] ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "<p id="spar0060" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Características clínicas de los sujetos del estudio: pacientes celíacos sin tratar y controles sanos</p>" ] ] 4 => array:7 [ "identificador" => "tbl0015" "etiqueta" => "Tabla 3" "tipo" => "MULTIMEDIATABLA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "tabla" => array:2 [ "tablatextoimagen" => array:1 [ 0 => array:2 [ "tabla" => array:1 [ 0 => """ <table border="0" frame="\n \t\t\t\t\tvoid\n \t\t\t\t" class=""><thead title="thead"><tr title="table-row"><th class="td" title="table-head " align="" valign="top" scope="col" style="border-bottom: 2px solid black"> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th><th class="td" title="table-head " align="left" valign="top" scope="col" style="border-bottom: 2px solid black">Riqueza \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th><th class="td" title="table-head " align="left" valign="top" scope="col" style="border-bottom: 2px solid black">Diversidad \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th><th class="td" title="table-head " align="left" valign="top" scope="col" style="border-bottom: 2px solid black">Riqueza ponderada por el rango \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th></tr></thead><tbody title="tbody"><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top"><span class="elsevierStyleItalic">EC</span> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">22,1 ± 5,04 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">2,91 ± 0,2 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">100,36 ± 47,44 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top"><span class="elsevierStyleItalic">CS</span> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">19,87 ± 5,1 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">2,50 ± 0,29 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">74,38 ± 37,38 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " colspan="4" align="left" valign="top"><span class="elsevierStyleVsp" style="height:0.5px"></span></td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " colspan="4" align="left" valign="top"><span class="elsevierStyleItalic">Género</span> Lactobacillus <span class="elsevierStyleItalic">en biopsias</span></td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top"><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>EC \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">6 ± 2<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#tblfn0005"><span class="elsevierStyleSup">*</span></a> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">1,5 ± 0,2<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#tblfn0005"><span class="elsevierStyleSup">*</span></a> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">9 ± 1<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#tblfn0005"><span class="elsevierStyleSup">*</span></a> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top"><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>CS \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">15 ± 3 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">2,2 ± 0,2 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">56,25 ± 2,25 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr></tbody></table> """ ] "imagenFichero" => array:1 [ 0 => "xTab1023036.png" ] ] ] "notaPie" => array:1 [ 0 => array:3 [ "identificador" => "tblfn0005" "etiqueta" => "*" "nota" => "<p class="elsevierStyleNotepara" id="npar0005">p<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span><<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>0,01.</p>" ] ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "<p id="spar0070" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Riqueza, diversidad y riqueza ponderada por el rango de la microbiota en especímenes obtenidos por biopsia de pacientes celíacos (EC) y controles sanos (CS)</p>" ] ] 5 => array:7 [ "identificador" => "tbl0020" "etiqueta" => "Tabla 4" "tipo" => "MULTIMEDIATABLA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "tabla" => array:1 [ "tablatextoimagen" => array:1 [ 0 => array:2 [ "tabla" => array:1 [ 0 => """ <table border="0" frame="\n \t\t\t\t\tvoid\n \t\t\t\t" class=""><thead title="thead"><tr title="table-row"><th class="td" title="table-head " align="" valign="top" scope="col" style="border-bottom: 2px solid black"> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th><th class="td" title="table-head " align="left" valign="top" scope="col" style="border-bottom: 2px solid black">CS (%) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th><th class="td" title="table-head " align="left" valign="top" scope="col" style="border-bottom: 2px solid black">EC (%) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th></tr></thead><tbody title="tbody"><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top"><span class="elsevierStyleItalic">Lactobacillus</span> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">13 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">7 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top"><span class="elsevierStyleItalic">Streptococcus</span> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">13 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">17 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top"><span class="elsevierStyleItalic">Bacteroides</span> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">11 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">16 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top"><span class="elsevierStyleItalic">Acinetobacter</span> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">10 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top"><span class="elsevierStyleItalic">E. coli</span> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">10 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">16 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top"><span class="elsevierStyleItalic">Bifidobacterium (B. brevis, B. bifidum, B. lactis)</span> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">10 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">5 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top"><span class="elsevierStyleItalic">Clostridium (C. coccoides)</span> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">9 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">8 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top"><span class="elsevierStyleItalic">Eubacterium</span> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">9 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">7 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">No identificados \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">9 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">16 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">No cultivados \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">6 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">8 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr></tbody></table> """ ] "imagenFichero" => array:1 [ 0 => "xTab1023035.png" ] ] ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "<p id="spar0075" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Abundancia relativa de distintos grupos microbianos secuenciados de la microbiota duodenal de niños con enfermedad celíaca (EC) y controles sanos (CS)</p>" ] ] ] "bibliografia" => array:2 [ "titulo" => "Bibliografía" "seccion" => array:1 [ 0 => array:2 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2024 Septiembre | 52 | 39 | 91 |
2024 Agosto | 72 | 58 | 130 |
2024 Julio | 63 | 31 | 94 |
2024 Junio | 65 | 26 | 91 |
2024 Mayo | 67 | 47 | 114 |
2024 Abril | 74 | 38 | 112 |
2024 Marzo | 69 | 24 | 93 |
2024 Febrero | 48 | 28 | 76 |
2024 Enero | 67 | 33 | 100 |
2023 Diciembre | 56 | 15 | 71 |
2023 Noviembre | 101 | 24 | 125 |
2023 Octubre | 74 | 29 | 103 |
2023 Septiembre | 63 | 23 | 86 |
2023 Agosto | 47 | 33 | 80 |
2023 Julio | 58 | 37 | 95 |
2023 Junio | 61 | 34 | 95 |
2023 Mayo | 65 | 77 | 142 |
2023 Abril | 47 | 40 | 87 |
2023 Marzo | 93 | 41 | 134 |
2023 Febrero | 51 | 25 | 76 |
2023 Enero | 41 | 23 | 64 |
2022 Diciembre | 90 | 28 | 118 |
2022 Noviembre | 70 | 42 | 112 |
2022 Octubre | 84 | 40 | 124 |
2022 Septiembre | 56 | 34 | 90 |
2022 Agosto | 66 | 63 | 129 |
2022 Julio | 52 | 41 | 93 |
2022 Junio | 69 | 44 | 113 |
2022 Mayo | 69 | 46 | 115 |
2022 Abril | 109 | 34 | 143 |
2022 Marzo | 129 | 44 | 173 |
2022 Febrero | 119 | 42 | 161 |
2022 Enero | 114 | 48 | 162 |
2021 Diciembre | 59 | 49 | 108 |
2021 Noviembre | 81 | 59 | 140 |
2021 Octubre | 56 | 59 | 115 |
2021 Septiembre | 34 | 50 | 84 |
2021 Agosto | 39 | 80 | 119 |
2021 Julio | 51 | 38 | 89 |
2021 Junio | 46 | 48 | 94 |
2021 Mayo | 54 | 45 | 99 |
2021 Abril | 104 | 79 | 183 |
2021 Marzo | 92 | 52 | 144 |
2021 Febrero | 95 | 34 | 129 |
2021 Enero | 77 | 39 | 116 |
2020 Diciembre | 63 | 28 | 91 |
2020 Noviembre | 31 | 36 | 67 |
2020 Octubre | 66 | 39 | 105 |
2020 Septiembre | 44 | 30 | 74 |
2020 Agosto | 59 | 26 | 85 |
2020 Julio | 66 | 23 | 89 |
2020 Junio | 68 | 23 | 91 |
2020 Mayo | 69 | 40 | 109 |
2020 Abril | 52 | 17 | 69 |
2020 Marzo | 54 | 19 | 73 |
2020 Febrero | 61 | 30 | 91 |
2020 Enero | 57 | 14 | 71 |
2019 Diciembre | 51 | 16 | 67 |
2019 Noviembre | 38 | 7 | 45 |
2019 Octubre | 42 | 50 | 92 |
2019 Septiembre | 63 | 22 | 85 |
2019 Agosto | 65 | 17 | 82 |
2019 Julio | 54 | 24 | 78 |
2019 Junio | 51 | 23 | 74 |
2019 Mayo | 134 | 22 | 156 |
2019 Abril | 96 | 50 | 146 |
2019 Marzo | 56 | 24 | 80 |
2019 Febrero | 45 | 15 | 60 |
2019 Enero | 34 | 19 | 53 |
2018 Diciembre | 66 | 33 | 99 |
2018 Noviembre | 131 | 39 | 170 |
2018 Octubre | 136 | 28 | 164 |
2018 Septiembre | 73 | 16 | 89 |
2018 Agosto | 6 | 0 | 6 |
2018 Julio | 7 | 0 | 7 |
2018 Junio | 10 | 0 | 10 |
2018 Mayo | 6 | 0 | 6 |
2018 Abril | 38 | 0 | 38 |
2018 Marzo | 26 | 0 | 26 |
2018 Febrero | 42 | 0 | 42 |
2018 Enero | 19 | 0 | 19 |
2017 Diciembre | 28 | 0 | 28 |
2017 Noviembre | 40 | 0 | 40 |
2017 Octubre | 33 | 0 | 33 |
2017 Septiembre | 25 | 0 | 25 |
2017 Agosto | 27 | 0 | 27 |
2017 Julio | 23 | 0 | 23 |
2017 Junio | 44 | 14 | 58 |
2017 Mayo | 43 | 21 | 64 |
2017 Abril | 62 | 15 | 77 |
2017 Marzo | 42 | 7 | 49 |
2017 Febrero | 41 | 9 | 50 |
2017 Enero | 29 | 13 | 42 |
2016 Diciembre | 52 | 17 | 69 |
2016 Noviembre | 56 | 23 | 79 |
2016 Octubre | 58 | 29 | 87 |
2016 Septiembre | 59 | 19 | 78 |
2016 Agosto | 62 | 13 | 75 |
2016 Julio | 47 | 16 | 63 |
2016 Junio | 1 | 0 | 1 |
2016 Mayo | 1 | 0 | 1 |
2016 Abril | 6 | 0 | 6 |